A asma ocupacional é um estreitamento das vias respiratórias caracterizado por episódios intermitentes de sibilância e garupa causados pela inalação de substâncias causadoras de asma num ambiente de fabrico. A garupa pode ser aliviada após a remoção da substância que causa a asma.
1. âmbito de aplicação
Esta norma especifica os critérios diagnósticos e os princípios de gestão da asma ocupacional.
Esta norma aplica-se ao diagnóstico e gestão da asma ocupacional.
2. documentos normativos de referência
As disposições dos seguintes documentos tornam-se as disposições desta norma por referência a esta norma. Todas as emendas subsequentes (excluindo as erratas) ou revisões de referências datadas não se aplicam a esta norma, contudo, as partes em acordos ao abrigo desta norma são encorajadas a investigar a possibilidade de utilizar as versões mais recentes destes documentos. Quando um documento de referência não tem data, a versão mais recente do documento aplica-se a esta norma.
GBZl8 Critérios de Diagnóstico de Doenças de Pele Ocupacionais (Disposições Gerais)
3. princípios de diagnóstico
O diagnóstico baseia-se num historial profissional e asmático preciso, combinado com a higiene laboral e investigações epidemiológicas e dados laboratoriais, e uma análise abrangente para excluir outras causas de asma ou perturbações do tracto respiratório.
4. tema de observação
Aqueles que apresentam aperto no peito, falta de ar, tosse, tosse e asma episódica, com escamas audíveis em ambos os pulmões, mas sem anomalias em índices laboratoriais específicos; ou aqueles que são encontrados com anomalias em índices laboratoriais específicos apenas durante o exame físico, mas sem sintomas e sinais clínicos típicos de asma episódica.
5. critérios de diagnóstico e classificação
5.1 Asma leve
A asma ligeira pode ser diagnosticada se alguma das seguintes situações estiver presente.
(1) Após um período de incubação de vários meses ou anos, o início do aperto do peito, a falta de ar, asma episódica, rales em ambos os pulmões, que podem ser acompanhados por tosse e tosse até à expectoração. A remoção da substância perigosa pode resultar num curto período de auto-remissão dos sintomas; a reexposição pode resultar em recorrência. O paciente pode ter anomalias em qualquer um dos indicadores laboratoriais específicos;
(2) Asma atípica com sinais laboratoriais de aumento da resposta das vias aéreas (por exemplo, teste positivo de excitação brônquica de acetilcolina ou histamina) e anomalias em qualquer um dos marcadores laboratoriais específicos.
5.2 Asma grave
Ataques recorrentes de asma por cima de asma leve com manifestações marcadas de hiper-responsividade das vias aéreas com enfisema e disfunção ventilatória obstrutiva persistente.
6. princípios de gestão
6.1 Princípios de tratamento
Durante ataques agudos, o paciente deve ser retirado do local de trabalho o mais rapidamente possível e tratado sintomaticamente, por exemplo, com oxigénio, medicação sibilante, antialérgica e medicina chinesa; se necessário, devem ser administrados glucocorticoides adrenais. Para ataques crónicos recorrentes, além do tratamento acima referido, é também necessária uma terapia de apoio adequada. Ver GZBl8.
6.2 Outra gestão
6.2.1 Temas para observação
Deve prestar-se atenção ao padrão de ocorrência e desenvolvimento de sintomas e sinais clínicos, para estabelecer o mais rapidamente possível a relação entre sintomas e factores ocupacionais, para realizar os testes laboratoriais necessários e, se necessário, para se afastar temporariamente do ambiente de trabalho original ou para realizar o teste de “afastamento e recuperação” e tratar os sintomas.
6.2.2 Asma ocupacional
Imediatamente após o diagnóstico ser estabelecido, o doente deve ser removido do local de trabalho original e deve ser-lhe dado o descanso e tratamento adequados. Após a recuperação, outros trabalhos podem ser arranjados. Para a asma grave, pode-se considerar a mudança do ambiente de vida e de trabalho, o tratamento dos sintomas e a organização de trabalhos leves inofensivos adequados, de acordo com o estado de saúde.
7. instruções para a utilização correcta desta norma
Instruções para a utilização correcta desta norma
A.1 O âmbito de aplicação desta norma é limitado às pessoas que estão directamente expostas aos seguintes agentes causadores de asma (alergénios ocupacionais).
a) Isocianatos: diisocianato de tolueno (TDl), diisocianato de dibenzilo (MDl), diisocianato de hexametileno (HDl), diisocianato de naftaleno (NDl), etc;
b) Anidrido ftálico: anidrido ftálico (PA), 1,2,4 anidrido benzeno-arboxílico (TMA), anidrido tetraclorobenzenodicarboxílico (TCPA), etc;
c) Agentes de cura de poliamina: etileno diamina, dietileno triamina, trietileno tetraamina, etc;
d) Sais complexos de platina;
e) sisal.
A.2 Uma história profissional e médica precisa é definida como
a) Exposição à gama acima referida de agentes causadores de asma (alergénios ocupacionais) no trabalho;
b) ausência de asma antes do trabalho;
c) o desenvolvimento de asma episódica ou reversível com rales nos pulmões após o trabalho;
d) provas fiáveis de que o ataque de asma está intimamente relacionado com a ocupação, ou seja, a asma desenvolve-se após a exposição, melhora ou desaparece nas férias, e pode repetir-se após a reexposição;
e) Os mediadores de taquifilaxia, anti-histamínicos e glucocorticoides adrenais são eficazes na prevenção e tratamento;
f) A experiência de trabalho é geralmente superior a seis meses.
A.3 As anomalias em indicadores laboratoriais específicos estão actualmente limitadas a
a) Teste de excitação brônquica ocupacional (de campo) positivo;
b) Teste de excitação brônquica positiva para alergénios de interior;
c) Teste positivo de anticorpos IgE específico de antigénio (teste de adsorção de radioalergénio – RAST ou ensaio de imunoabsorção enzimática – ELIST);
d) Teste cutâneo de alergénio positivo repetido (intradérmico, picada ou arranhão).
A.4 O diagnóstico desta doença deve ser diferenciado das infecções das vias respiratórias superiores, bronquite sibilante crónica, asma cardiogénica, alveolite alérgica exógena e asma brônquica primária não ocupacional.
Apêndice B
(Apêndice normativo)
Testes cutâneos alérgenos atópicos
B.1 Ensaio de remendo
Segundo GBZ18-2002 Apêndice C (apêndice normativo).
B.2 Teste intradérmico
B.2.1 Procedimento
B.2.1.1 O sujeito deve ser rotineiramente desinfectado no exterior do antebraço.
B.2.1.2 Utilizar uma seringa de tuberculina lml esterilizada e uma agulha intradérmica calibre 26-27 para extrair a solução de teste e injectar aproximadamente 0,02-0,1ml na pele.
B.2.1.3 Um teste de lise antigénica de controlo é realizado simultaneamente no braço superior de outro caso.
B.2.2 Observação e julgamento
Observar os resultados da reacção 15-20 min após a injecção e os critérios para determinar a reacção são
Sem reacção cutânea local, ou apenas uma pequena reacção papular ou eritematosa semelhante à do controlo (-)
Pápulas com menos de 0,5 cm de diâmetro e eritema menos óbvio (±)
Pápulas de 0,5-1,0 cm de diâmetro com eritema (+)
Pápulas cutâneas localizadas de 1,1-1,5cm de diâmetro com reacção eritematosa marcada (++)
Pápulas cutâneas locais de diâmetro superior a 1,5 cm com reacção eritematosa marcada e pseudopods (+++)
A reacção cutânea local é a mesma (++++), enquanto reacções periféricas como prurido cutâneo, ruborização, respiração, asma, etc. estão também presentes (++++)
B.2.3 Precauções
a) Os testes cutâneos devem ser efectuados em remissão;
b) Os testes cutâneos não devem ser realizados em pessoas com cicatrizes cutâneas significativas;
c) Os anti-histamínicos devem ser descontinuados antes do teste e os glucocorticoides adrenais devem ser descontinuados, se possível;
d) O antigénio utilizado deve ser estéril e na concentração apropriada. O teste deve ser realizado com precisão e não deve sangrar;
e) Deve ser dada atenção a quaisquer reacções sistémicas e devem estar disponíveis medicamentos de emergência em caso de emergência.
B.3 Teste de raspagem
B.3.1 Procedimento
B.3.1.1 A pele do sujeito deve ser rotineiramente desinfectada no braço lateral ou antebraço medial e lavada com água destilada ou salina. B.3.1.2 Após a pele ter secado, fazer um arranhão directo com a ponta de uma agulha, sendo cada arranhão de 3-5 mm de comprimento, para evitar a hemorragia.
B.3.1.3 Aplicar uma gota de solução de teste cutâneo ao arranhão.
B.3.1.4 Teste de controlo com meio de lise antigénico.
B.3.2 Observação e julgamento
Os resultados da reacção são observados 15-20 minutos após o coçar e são julgados pelos seguintes critérios.
a pele local do arranhão é a mesma que no teste de controlo (-)
Ligeira elevação da pele com uma mancha vermelha clara à volta do arranhão (+)
Uma elevação em forma de pápula da pele ao longo do comprimento do arranhão, rodeada por um eritema distinto (++)
Elevação papular localizada da pele com pseudopods circundados por uma reacção eritematosa irregular distinta (+++)
Arranhão localizado a uma pápula cutânea com dois ou mais pseudo-pods, comichão e eritema marcado à volta da pele (++++)
B.3.3 Precauções
O mesmo que B2.3.
Se uma forte reacção cutânea ocorrer menos de 15 minutos após o teste cutâneo, o antigénio pode ser esfregado com algodão mergulhado em água destilada para evitar um maior desenvolvimento da reacção.
B.4 Teste da picada
B.4.1 Procedimento
B.4.1.1 A pele do sujeito é rotineiramente desinfectada no interior do canal anterior ou no exterior da parte superior do braço.
B.4.1.2 Aplicar uma gota de solução de teste cutâneo no local do teste cutâneo.
B.4.1.3 Utilizando uma agulha de punção especial (ou uma agulha hipodérmica comum), perfurar 0,5-1 mm paralelamente à superfície da pele no centro da pele com a gota da solução de teste cutâneo, depois levantar ligeiramente a ponta da agulha para permitir que a solução de teste cutâneo flua para a pele, e depois retirar rapidamente a agulha. O excesso de solução de teste cutâneo não deve sangrar durante toda a operação.
B.4.1.4 Teste de controlo com meio de lise antigénico.
B.4.2 Observação e julgamento
Observar a reacção 15 a 20 minutos após a perfuração. O julgamento pode ser feito através do registo directo do tamanho da massa de vento e eritema em diâmetro e comparando-o com o controlo para determinar se é positivo ou não (um controlo normal não deve ter massa de vento ou apenas um pequeno monte com menos de 3 mm de diâmetro sem eritema circundante).
B.4.3 Precauções
O mesmo que B2.3.
Apêndice C
(Apêndice normativo)
Ensaio IgE específico para antígenos – teste de adsorção de radioalergénio (RAST)
C.1 Princípio
Os alergénios são reticulados a um polímero de fase sólida como o gel de glucose, partículas de celulose ou papel e depois adicionados ao soro em teste. Os anticorpos específicos (1gE, etc.) no soro ligam-se ao alergénio, o excesso de soro é lavado, adiciona-se o conjugado anti-IgE com 125I, e após um certo período de incubação, forma-se o último portador de fase sólida-alergénio específico IgE-anti-IgE, complexo 125I. O excesso de anticorpos rotulados é lavado. A quantidade de IgE específico no soro pode ser determinada medindo a quantidade de radiotraçador restante na folha de papel usando um contador de raios Y.
C.2 Equipamento
Papel de filtro Xinhua ou Watteman I, papel de filtro, microfiller, papel de filtro Brinell, contador de y-ray, atractor de pressão negativa, agitador magnético, medidor de pH ou papel de teste.
C.3 Reagentes
a) Alergénios ;
b) Brometo de cianogénio;
c) 0,01 mol/L (pH 7,4) tampão fosfato;
d) Solução de 5 mol/L de fosfato de potássio;
e) 0,005moL, solução de bicarbonato de sódio 0,1/L;
f)IgE-IgGG cavalo anti-humano;
g)acetona;
h)1 mol/L, 0,05 mol/L etanolamina;
i)0,1moI/L (pH 4,0) tampão de ácido acético-acetato de sódio;
j) Albumina de soro bovino, ou albumina de soro humano (HSA).
C.4 Métodos
C.4.1 Preparação de folhas de papel de filtro de brometo de cianogénio activado
Papel de filtro Waterman I ou Xinhua, perfurado em folhas de papel de 6mm de diâmetro (100 folhas aprox. 300mg) usando um furador.
Pesar 4g de brometo de cianogénio com 80ml de água duplamente destilada, dissolver num banho de água e agitar. Pesar 4g de papel num balão triangular arrolhado e mergulhar em água fria duplamente destilada durante 30min. aspirar a água destilada e adicionar 80ml de solução de brometo de cianogénio a 5%. ajustar o pH a cerca de 11 com 5mol/L de fosfato pré-resfriado, agitar durante 8min e ajustar o pH continuamente. Depois foram utilizados 800ml de 0,005mol/L bicarbonato de sódio em 5 lavagens sucessivas, seguidas de 3 a 4 lavagens sucessivas com 400ml de água bidestilada. Finalmente, lavar com 400ml de acetona 4 vezes consecutivas e colocar num grande prato plano para secar.
C.4.2 Preparação do antigénio (varia de acordo com o tipo de antigénio)
C.4.3 Proteína de acoplamento: pesar 30mg de HSA e dissolver com 0,1mol/L de bicarbonato de sódio 60mi. Colocar 15ml de solução de HSA em cada 200 pedaços de papel e rodar o tambor a 8C durante 48h. Lavar 3 vezes com 0,1mol/L bicarbonato de sódio e 3 vezes com 0,01mol/L (pH 7,4) PBS.
C.4.4 Antigénio de acoplamento: Preparar a concentração apropriada de antigénio, adicionar à folha de papel e rodar o tambor a 8°C durante 48h, seguido de 3 lavagens com solução de PBS 0,01 mol/L (pH 7,4).
C.4.5 Fechamento: Adicionar as folhas de papel acima a 15 ml de 0,25 mol/L etanolamina, SC, tambor durante 8h, lavar 3 vezes com bicarbonato de sódio 0,1 mol/L, 3 vezes com monoacetato de sódio 0,1 mol/L (pH 4,0) e 3 vezes com 0,01 mol/L (pH 7,4) PBS. Armazenar a 4°C para backup.
C.4.6 Procedimento de ensaio RAST
C.4.6.1 Colocar as folhas de papel ligadas a antigénios e proteínas no fundo do tubo de ensaio, 1 folha por tubo.
C.4.6.2 Adicionar 50 uL do soro a ser testado a uma certa concentração de diluição (geralmente 1:5) por tubo num disco de papel filtro, e 50 uL cada um de tampão e soro negativo num disco de papel filtro como controlo.
C.4.6.3 Retirar o líquido de cada tubo com um aspirador de pressão negativa e depois lavar 3 vezes com 0,05 mol/L (pH 7,4) PBS contendo 0,3% de soro de cavalo.
C.4.6.4 Adicionar 50uL de anticorpo IgE equino 125I rotulado como anti-humano (aproximadamente 5 a 80,000CMP) a cada tubo de discos de papel de filtro. Deixar à temperatura ambiente durante a noite, após o que lavar 3 vezes como acima.
C.4.6.5 Após aspiração, medir a radioactividade (CPM/min) por contador Y e comparar com indivíduos normais. Uma pontuação superior a dois desvios padrão (2SD) da média normal é considerada positiva.
Apêndice D
(Apêndice normativo)
Ensaio IgE específico de antigénio – Ensaio de imunoabsorção enzimática ligada (ELIST)
D.1 Princípio
O complexo antigénio-anticorpo-anticorpo é formado pela ligação do alergénio a um portador de fase sólida, uma placa côncava de poliestireno, adicionando o soro a ser testado, causando uma ligação específica do antigénio e do anticorpo, e depois adicionando um anticorpo secundário com rótulo de peroxidase de rábano (IgE equino anti-humano). conteúdo.
D.2 Equipamento
Placa de poliestireno de poços côncavos, microfiller, ELISA, papel de teste de PH, termóstato, frigorífico, frasco de lavagem, caixa molhada, instrumentos de vidro comuns, etc.
D.3 Reagentes
a) albumina de soro humano (HSA) (0,05%);
b) Alergénio;
c) 0,02 mol/L (pH 7,4) tampão fosfato (PBS);
d) Tween-20 (0,05 ml por 100 ml de solução de PBS-T para fazer PBS-T);
e) albumina de soro bovino (BSA) ou soro de bezerro (10%);
f) 0,05 mol/L (pH 9,6) tampão carbonato;
g) Tampão monocitrato de fosfato de pH 5,0;
h) o-fenilenodiamina (OPD);
i) Peróxido de hidrogénio a 30%;
j) Cavalo peroxidado de cavalo com rótulo de anti-humano IgE;
k) Ácido sulfúrico 2 mol/L.
D.4 Métodos
D.4.1 HSA encapsulado, 37°C, 2L.
D.4.2 Lavar 3 vezes com PBS-T.
D.4.3 Adicionar alergénio de um dia para o outro a 4°C.
D.4.4 Lavar 3 vezes com PBS-T.
D.4.5 Adicionar o soro a ser testado (diluição PBS-T com 1% de BSA, diluição 1:5) a 37°C durante 90 min.
D.4.6 Lavar 6 vezes com PBS-T.
D.4.7 Adicionar o anticorpo marcado com enzima, 37°C, 90min.
D.4.8 Lavar 8 vezes com PBS0-T.
D.4.9 Adicionar solução de substrato 0,02% OPD contendo luL/10ml de peróxido de hidrogénio, 37°C, 30min.
D.4.10 Terminar a reacção com ácido sulfúrico 2 mol/L.
D.4.11 Determinar o valor de DO usando um ELISA a 492 nm.
D.4.12 Determinação dos resultados: maior que o valor médio normal de 2 SD é considerado positivo.
Apêndice E
(Apêndice normativo)
Teste de excitação brônquica alergénica
E.1 Teste de excitação alérgena de re-traqueal
E.1.1 Preparação pré-teste e condições básicas
E.1.1.1 Realizada em remissão (assintomática) da asma.
E.1.1.2 Interromper β-adrenoceptores estimulantes e bloqueadores a-adrenoceptores 8-12 h antes do teste, inibidores de fosfodiesterase 18-24 h antes do teste, cromoglicato de sódio e anti-histamínicos 24 h antes do teste, e glicocorticóides adrenais 3-5 dias antes do teste.
E.1.1.3 Parar de fumar e de consumir alimentos e bebidas estimulantes durante 6 h antes do teste e evitar o exercício excessivo.
E.1.1.4 O sujeito não tem nenhuma infecção recente do tracto respiratório superior.
E.1.1.5 Preparar medidas seguras de primeiros socorros, tais como oxigénio, medicamentos, etc.
E.1.2 Métodos
A padronização deste método de ensaio não foi concluída na China e, portanto, os seguintes princípios devem ser seguidos como um mínimo na prática.
E.1.2.1 Seleccionar um método adequado e eficaz de teste de provocação brônquica. Os seguintes métodos são normalmente aplicados
a) Devilbiss 646 nebulizador com 5 inspirações profundas na posição residual funcional, libertando uma dose de aerossol a 0,6s no início de cada inspiração;
b) Respiração da maré com o nebulizador de Wrights durante 2 min;
c) medição directa da reactividade das vias aéreas por um alergómetro (Astographia) fabricado no Japão.
Para além dos três métodos acima mencionados, outros métodos e nebulizadores que satisfazem os requisitos e dispositivos que podem determinar a quantidade de nebulização também podem ser utilizados para o teste. O diâmetro das partículas do aerossol produzido pelo nebulizador deve ser inferior a 5 um em média.
E.1.2.2 O volume de antigénio para o teste de provocação brônquica deve ser a dose mais pequena a que o doente é exposto e que elicite uma resposta brônquica. A presença de um dermatoma de 3 mm (++), ou 200 unidades de azoto proteico/ml, ou uma concentração de antigénio de 10-5 a 10-3 (W/V) no teste de punção pode ser utilizada como referência para a concentração de antigénio aspirado. Ao determinar a quantidade de cada antigénio, deve ser seguido o princípio de começar com uma dose pequena e aumentar gradualmente a quantidade aspirada.
E.1.2.3 O índice da função pulmonar (FEV1.0) deve ser medido antes do teste como valor base e a diferença entre os dois resultados não deve ser superior a 5%; se o antigénio for adicionado a uma diluição, o teste também deve ser realizado após a diluição ter sido aspirada como valor de controlo antes de o antigénio ser aspirado e o valor não deve mudar em mais de 10% do valor base.
E.1.2.4 A espirometria do primeiro segundo exercício (FEV1.0) pode ser utilizada como medida de excitação brônquica, bem como outras medidas como a condutividade das vias aéreas (Sgaw). O intervalo entre observações não deve ser superior a 15-30 min. durante os primeiros 1/J’ de inalação.
E.1.2.5 Para além das reacções dentro de 2 h (na sua maioria 10-30 min) após inalação do alergénio, deve ser dada atenção às reacções atrasadas ou bidireccionais que ocorrem dentro de 4-6 h. Por conseguinte, o tempo total de observação deve ser de 24 h.
E.1.3 Critérios de reacção positiva
E.1.3.1 Uma diminuição do VEFl.0 de mais de 15% em comparação com o que se verificava antes da inalação do antigénio. Isto é calculado como
E.1.3.2 Se houver sintomas e sinais óbvios após a excitação, tais como aperto do peito, falta de ar, tosse grave e inchaços nos pulmões, o valor superior deve ser relaxado e (10% ou mais) julgado como positivo.
E.1.4 Precauções
a) As concentrações de inalação de alergénio não devem ser demasiado elevadas para evitar irritação;
b) O teste não deve ser realizado para certos alergénios fortes (por exemplo, penicilina) ou se o paciente tiver um historial prévio de hipersensibilidade (por exemplo, anafilaxia) ou outras perturbações sistémicas significativas;
c) O teste não deve ser realizado em pacientes com estado cardiopulmonar extremamente pobre, com VEF1.0 <1L;
d) O teste deve ser realizado num hospital apropriado, dado o equipamento e os requisitos técnicos do teste e a possibilidade de reacção excessiva em casos individuais;
e) Não é aconselhável utilizar a sugestão antes ou durante o teste e não deve ser excessivamente stressante.
E.2 Teste de excitação brônquica ocupacional (de campo)
E.2.1 Preparação pré-teste e condições básicas
O mesmo que E.1.1. E, 2.2 Método
E.2.2.1 Medir a ventilação (FEV1.0) de 15 em 15 minutos durante a primeira hora após a entrada no local de trabalho. Para a segunda hora, medir a função de ventilação de meia em meia hora. Permanecer no local durante 1 a 2 horas, dependendo da situação.
E.2.2.2 Após a desexposição, medir a função pulmonar a cada 1 hora e anotar e registar sinais e sintomas clínicos. Observar continuamente durante pelo menos 8h e outra medição deve ser feita às 24h.
E.2.2.3 Se houver uma diminuição significativa dos indicadores da função pulmonar e dos sintomas e sinais respiratórios, o teste de provocação pode ser terminado, ou seja, aspirado com um fármaco broncodilatador como o spray de albuterol, e observado para a recuperação dos indicadores da função pulmonar.
E.2.3 Critérios de resposta positiva
O mesmo que E.1.3.
E.2.4 Precauções
O mesmo que E.1.4.